Методы лабораторной диагностики брюшного тифа

Брюшной тиф и паратифы А, В и С являются антропонозными кишечными инфекциями. В настоящее время чаще регистрируется брюшной тиф, реже — паратиф B, редко — паратиф A и крайне редко — паратиф C.

Дорогие читатели! Наши статьи рассказывают о типовых способах решения проблем со здоровьем, но каждый случай носит уникальный характер.

Если вы хотите узнать, как решить именно Вашу проблему - начните с программы похудания. Это быстро, недорого и очень эффективно!


Узнать детали

Брюшной тиф

Методические рекомендации. Бактериологическая диагностика брюшного тифа и паратифов А, В и С. Пастера Роспотребнадзора Л. Кафтырева, З. Матвеева, Г. Мечникова" Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию А. Онищенко 29 декабря г. В методических рекомендациях изложены основные принципы и особенности бактериологической диагностики брюшного тифа и паратифов А, В и С; содержатся современные сведения о биологических свойствах возбудителей, резистентности к антибактериальным препаратам, о питательных средах для их выделения и особенностях дифференциации возбудителей брюшного тифа и паратифов от других серологических вариантов сальмонелл.

Методические рекомендации предназначены для специалистов микробиологических лабораторий, проводящих соответствующие исследования. Возможна дифференциация на ферментативные варианты.

В настоящее время чаще регистрируется брюшной тиф, реже - паратиф В, редко - паратиф А и крайне редко - паратиф С. Заболевания характеризуются язвенным поражением лимфатической системы тонкой кишки, бактериемией, лихорадкой, циклическим клиническим течением с выраженной интоксикацией, розеолезной сыпью на кожных покровах туловища, гепато- и спленомегалией. Более характерен запор, нежели диарея.

Диагноз брюшного тифа и паратифов А, В и С ставится на основании клинических признаков болезни с учетом эпидемиологического анамнеза и данных комплексного лабораторного обследования, которое включает классические бактериологический и серологический методы. Бактериологическая диагностика имеет приоритетное значение, так как в этом случае удается получить наиболее полную информацию о биологических свойствах возбудителя, включая его чувствительность к антибактериальным препаратам.

Этот факт заставляет более тщательно подходить к вопросу выбора материала для исследования, взятия исследуемого материала, техники исследования.

Современной особенностью эпидемиологии брюшного тифа является резкое увеличение частоты завоза заноса инфекции с эндемичных по этому заболеванию территорий, стран ближнего и дальнего зарубежья, а также заражение жителей России при выезде в эти страны и в процессе миграции внутри страны.

Другой особенностью является наличие обширного контингента высокого эпидемиологического риска в виде лиц без определенного места жительства, среди которых регистрируется высокая заболеваемость брюшным тифом.

Данные методические рекомендации составлены с целью унификации методов бактериологической диагностики брюшного тифа и паратифов А, В и С, а также правильной интерпретации результатов лабораторного исследования с учетом современных особенностей клиники, лечения и эпидемиологической обстановки на конкретных территориях. Показанием к проведению бактериологического исследования биологического материала на наличие возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С является необходимость обследования:.

Стандартное испытательное и вспомогательное оборудование, средства измерения для микробиологических лабораторий. Питательные среды, диагностические сыворотки и химические реагенты для культивирования, выделения, идентификации и определения чувствительности к антибактериальным препаратам возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С. Для лабораторной диагностики тифо-паратифозных заболеваний и выявления бактерионосителей должны использоваться питательные среды и реагенты, разрешенные к применению на территории Российской Федерации в установленном порядке.

Принцип бактериологического метода основан на обнаружении живых микроорганизмов в различных биологических субстратах кровь, моча, кал, желчь, костный мозг, розеолы в зависимости от стадии заболевания. Для этого производят посев определенного количества биологического материала на специальные питательные среды с последующей инкубацией в термостате и идентификацией выросших колоний микроорганизмов, характерных для S.

Typhi, S. Paratyphi A, S. Paratyphi В и S. Paratyphi С, по культурально-ферментативным свойствам и антигенной характеристике. Только бактериологическое исследование может обеспечить точную постановку этиологического диагноза и контроль освобождения организма от возбудителя.

В отношении дифференциальной диагностики брюшного тифа и паратифов единственным методом является лабораторное исследование биологического материала с выделением возбудителя и идентификация его до уровня серологического варианта, так как клиническое течение инфекционного процесса не всегда позволяет различить эти нозологические формы.

Выделение возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С проводят по одной и той же схеме бактериологического исследования биоматериалов. Порядок сбора материала для лабораторных исследований на тифо-паратифозные заболевания определен СП 3. Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории описана в МУ 4. Материалом для бактериологического исследования с целью диагностики брюшного тифа и паратифов являются: кровь; испражнения; моча; желчь дуоденальное содержимое.

Возбудители могут быть также выделены из: розеол; костного мозга; грудного молока. Материалом для бактериологического исследования с целью выявления бактерионосителей, согласно СП 3. Исследование секционного материала проводится с целью уточнения диагноза. Сбор биологического материала для лабораторных исследований осуществляется до начала этиотропного лечения: медицинским работником, заподозрившим тифо-паратифозную инфекцию; при групповой и вспышечной заболеваемости - специалистами учреждений Роспотребнадзора и персоналом лечебно-профилактических учреждений.

От госпитализируемых больных материал для бактериологического исследования забирается в приемном отделении стационара. От лиц, общавшихся с больными или носителями контактными , сбор материала проводится медицинскими работниками ЛПУ и других организаций и учреждений по месту выявления больных. Биоматериал для лабораторного исследования сопровождают специальным направлением.

Доставка материала самими обследуемыми не допускается. При невозможности своевременной доставки материала используют консерванты и транспортные среды табл. Показанием к исследованию крови является подозрение на тифо-паратифозные заболевания или лихорадочное состояние невыясненного происхождения лихорадка неясного генеза , наблюдающееся в течение 5 и более дней СП 3.

Соотношение кровь - питательная среда должно быть Количество независимо отбираемых проб крови и время их взятия определяется лечащим врачом согласно МУ 4. У больных, получающих антибактериальные препараты, пробы необходимо собирать непосредственно перед введением приемом следующей дозы препарата.

При наличии лихорадки оптимальным является взятие крови на фоне повышения температуры тела но не на пике температуры! Посев на питательные среды проводят непосредственно у постели больного.

Ранее использовали посев крови в стерильную дистиллированную водопроводную воду. Однако предпочтительнее использовать специальные среды для посева крови. Количество засеваемой крови в разгар лихорадки может составлять 10 мл, в более поздние сроки - до 20 мл у детей - до 5 мл.

При лихорадке неясного генеза продолжительностью более 5 дней, как правило, должны исследоваться несколько проб крови. Взятие крови из вены проводят согласно МУ 4. Предпочтительно использовать промышленно произведенные среды, разрешенные к применению в России. При этом флаконы с "двойной" средой наклоняют, омывая плотную часть среды. При отсутствии признаков роста на й день выдается отрицательный ответ.

При наличии признаков роста помутнение, покраснение среды Рапопорт, появление видимых колоний на плотной части "двойной" среды проводят высев параллельно на полиуглеводную среду и плотную среду в чашках Петри кровяной агар в случае лихорадки неясного генеза и среда Эндо при подозрении на тифо-паратифозные заболевания.

Прямой высев на полиуглеводные среды проводят для сокращения сроков исследования, исходя из предположения, что при посеве крови с высокой вероятностью будет наблюдаться рост монокультуры возбудителя.

Для контроля этого предположения и выделения чистой культуры путем откола отдельных колоний необходим параллельный высев на среду Эндо или кровяной агар. Если на этих средах наблюдается рост монокультуры, то можно учитывать биохимические свойства по полиуглеводной среде. Для контроля чистоты культуры необходимо провести микроскопию мазка с полиуглеводной среды, окрашенного по Граму.

На этом этапе возможна также постановка реакции агглютинации на стекле с соответствующими агглютинирующими О- и Н-сальмонеллезными сыворотками и выдача предварительного ответа. Схема бактериологического исследования крови пациентов с подозрением на брюшной тиф и паратифы представлена на рис.

Схема бактериологического исследования крови пациентов с подозрением на брюшной тиф и паратифы. Схема бактериологического исследования крови пациентов при лихорадке неясного генеза представлена на рис. Схема бактериологического исследования крови пациентов с лихорадкой неясного генеза. Ход дальнейшей идентификации культуры по культурально-морфологическим, ферментативным свойствам и серологической характеристике изложен далее в соответствующих разделах. Пробы испражнений отбирают сразу после дефекации из дезинфицированного и тщательно вымытого судна, на дно которого был помещен лист плотной чистой бумаги.

Материал собирается с помощью ложки-шпателя, вмонтированного в крышку стерильного контейнера. В отсутствие контейнера со шпателем для отбора материала используют любой стерильный инструмент стерильный деревянный шпатель, проволочная петля, ложечка и т. При наличии патологических примесей необходимо выбрать участки, содержащие слизь, гной, хлопья, но свободные от крови. Образцы жидких испражнений отбирают с помощью стерильной пластиковой пастеровской пипетки с замкнутым резервуаром. Объем забираемого материала должен быть не менее 2 г.

Оптимальным является взятие материала в случае оформленного стула - в объеме грецкого ореха; в случае жидкого стула его слой в контейнере должен быть не менее 1,,0 см. Материал, помещенный в стерильный контейнер, доставляется в лабораторию в течение 2 ч. Если материал невозможно доставить в лабораторию в течение 2 ч, его собирают в консервант транспортную систему со средой. Объем материала не должен превышать объема среды.

Испражнения должны быть тщательно гомогенизированы в среде. Транспортные среды и консерванты, используемые для выделения возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С, а также других возбудителей острых кишечных инфекций, представлены в табл. Транспортные среды и консерванты, наиболее часто используемые для транспортирования испражнений. Пробы испражнений, собранные непосредственно из прямой кишки с помощью ректального тампона, используют преимущественно для объективизации диагноза МУ 4.

Взятие материала осуществляется средним медицинским персоналом. Как правило, специальный зонд для взятия мазка входит в состав транспортной системы.

Важно отметить, что попадание транспортных сред на слизистую прямой кишки недопустимо! Поэтому ректальный тампон должен погружаться в транспортную среду только после взятия материала.

Больного просят лечь на бок с притянутыми к животу бедрами и ладонями развести ягодицы. Зонд-тампон вводят в задний проход на глубину см и, аккуратно вращая его вокруг оси, собирают материал с крипт ануса. Осторожно извлекают зонд-тампон и погружают его в транспортную среду.

Транспортирование тампона без среды не допускается. В лаборатории посев проб испражнений проводят непосредственно на плотные дифференциально-диагностические питательные среды и параллельно на среду обогащения.

Схема бактериологического исследования испражнений представлена на рис. Схема бактериологического исследования испражнений. После этого одну каплю надосадочной жидкости засевают на чашки с плотными питательными средами и 1 мл суспензии - в среду обогащения соотношение материал-среда должно быть Испражнения, доставленные в лабораторию в консерванте транспортной среде , перед посевом должны быть тщательно гомогенизированы в среде, после чего проводят прямой посев материала на плотные среды и среду обогащения в тех же соотношениях, что и нативные испражнения.

Пробы испражнений, собранные с помощью ректального тампона, исследуются аналогично испражнениям, доставленным в консерванте. Следует помнить, что ректальный тампон содержит меньшее количество микроорганизмов по сравнению с нативными испражнениями, поэтому посевная доза должна быть увеличена. Максимальное выявление S.

Брюшной тиф и паратифы

Брюшной тиф и паратифы А и В — инфекционные болезни, вызываемые соответственно Salmonella typhi, Salmonella paratyphi, Salmonella schottmuelleri, сопровождающиеся сходными патогенетическими и клиническими проявлениями, характеризующиеся. Название рода Salmonella связано с именем Д. Возбудители брюшного тифа и паратифов А и В относятся к отделу Gracilicutes, семейству Enterobacteriaceae, роду Salmonella, включающему более видов. Морфология и тинкториальные свойства. Сальмонеллы — мелкие, длиной 2—3 мкм, шириной 0,5—0,7 мкм, грамотрицательные палочки с закругленными концами см. В мазках располагаются беспорядочно.

Методические рекомендации. Бактериологическая диагностика брюшного тифа и паратифов А, В и С

Купить систему Заказать демоверсию. Лабораторная диагностика брюшного тифа и паратифов. Лабораторные исследования например, микробиологические, серологические, молекулярно-генетические, вирусологические клинического материала от больного брюшным тифом или паратифами и в случае подозрения на бактерионосительство брюшным тифом или паратифами, осуществляют лаборатории, имеющие разрешение на работу с возбудителями III - IV групп патогенности. Методами для подтверждения этиологии брюшного тифа и паратифов являются бактериологическое исследование - полимеразная цепная реакция ПЦР , серологическое исследование - реакция пассивной гемагглютинации РПГА и другие методы, позволяющие проводить индикацию и идентификацию возбудителей. Подтверждение этиологии брюшного тифа и или паратифов проводится методами, доступными для лаборатории, в зависимости от стадии патогенеза заболевания: при лихорадке первая неделя заболевания - исследуется кровь бактериологическим и молекулярно-генетическим методами; в конце первой недели и в последующие дни исследуются пробы кала, мочи, по клиническим показаниям - желчь бактериологическим методом. II , ст.

Одной из первых исторически известных эпидемий брюшного тифа была Афинская чума [5]. В России XIX в. Первые упоминания о возбудителе имеются в докладе, сделанном в г. Цюрихе в году Эбертом. Одновременно с Эбертом изучением бактерии занимались Кох , Клебс и Мейер. Подвижная грамотрицательная палочка с закруглёнными концами, хорошо окрашиваемая всеми анилиновыми красителями. Экзотоксина нет.

.

.

.

.

Комментариев: 3

  1. EStar77:

    Это надо попробовать, ни чего сложного..

  2. sharon68:

    А дистилированную воду я тоже делаю в скороварке. Подсоединяю тонкий шланг и гоню воду, спирт, духи. у меня всё бесплатно. Ну а врач мне никогда ни разу не помог. Может врачи мне такие попадались. Растения пьют дождевую воду несмотря на промышленные выбросы предприятий.

  3. vista.andrey:

    Галина, а для меня время дороже. Да и ничего особенного они не кладут)))